Causado por el hongo necrótrofo Botrytis cinerea, el moho gris es uno de los desafíos fitopatológicos más críticos y costosos de la floricultura mundial. Su impacto es especialmente grave en cultivos de exportación de alta exigencia estética, como la rosa (Rosa spp.), donde el patógeno no solo reduce la productividad en campo, sino que permanece latente como una amenaza crítica durante las etapas de poscosecha y distribución, ocasionando pérdidas anuales estimadas en al menos el 30 % de la producción (Ullah et al., 2024).
La complejidad en el control de B. cinerea radica en su capacidad para colonizar el tejido vegetal de forma asintomática. El hongo se establece en las estructuras florales y permanece en estado de quiescencia si el entorno no favorece su avance inmediato; sin embargo, reactiva la infección de manera agresiva cuando las condiciones se vuelven propicias, lo que suele coincidir con la poscosecha. Debido a esta latencia, las flores infectadas no muestran síntomas al momento del corte, pero pueden bastar menos de 24 horas entre la reactivación del patógeno, la aparición de los primeros síntomas y el deterioro total del producto (Ullah et al., 2024; Zerdoner et al., 2025).
El desarrollo del moho gris durante el transporte ya sea por vía aérea o marítima, desencadena consecuencias críticas: desde costosos reclamos por calidad y la devaluación total de los embarques, hasta severas sanciones y rechazos fitosanitarios en puertos de destino clave como Estados Unidos o la Unión Europea.
El control del moho gris ha dependido históricamente de la aplicación semanal de fungicidas de síntesis química. Este esquema técnico incluye una amplia gama de ingredientes activos de diversos grupos químicos, entre los que destacan moléculas como pirimetanil, ciprodinil, fludioxonil, boscalid, fluopyram, pentiopirad, iprodiona, fluazinam, clorotalonil, azoxistrobina, difenoconazol, fenhexamida, mancozeb, procloraz y tebuconazol, entre otros (Bika et al., 2021; Ullah et al., 2024).
No obstante, B. cinerea es reconocido como un patógeno de alto riesgo al desarrollo rápido de resistencia a los fungicidas usados para su control (FRAC 2019). La constante aplicación de fungicidas ha ejercido una fuerte presión de selección favoreciendo la aparición de cepas multirresistentes, fenómeno que ha comprometido significativamente la eficacia de los tratamientos químicos convencionales, limitando el control de la enfermedad (Muños et al., 2019; Giraldo et al., 2024; Lukasko & Hausbeck 2024; Ullah et al., 2024).
Asimismo, la alta dependencia de fungicidas altera el equilibrio del agroecosistema y acelera la aparición de resistencia en el patógeno. Para mitigar este impacto, el sector exige la incorporación de estrategias biológicas y de bajo impacto ambiental capaces de sinergizar con el control químico convencional. De este modo, es posible estructurar esquemas híbridos que disminuyan paulatinamente la frecuencia de aplicación y la diversidad de ingredientes activos aplicados.
Para lograr una estrategia de control efectiva y sostenible, es fundamental implementar un manejo integrado que combine la rotación de fungicidas químicos basada en diferentes modos de acción y criterios toxicológicos con el uso bioplaguicidas formulados con microorganismos antagonistas; estos últimos reducen el inóculo de B. cinerea mitigando el riesgo de desarrollo de resistencia (Elad, 2016).
Uno de estos bioplaguicidas es Tricotec® WG (desarrollado por AGROSAVIA) cuyo principio activo son conidios del hongo Trichoderma koningiopsis cepa Th003, este hongo presenta alta adaptabilidad a las condiciones del suelo y la filosfera, y mediante la competencia por espacio y nutrientes, la producción de compuestos antifúngicos, la producción de enzimas líticas, el micoparasitismo o la inducción de respuestas de defensa reduce la infección del patógeno (Cotes et al., 2018; Moreno-Velandia et al., 2020).
En evaluaciones comerciales bajo invernadero con las variedades Orange Crush y Freedom, (la primera una flor de color naranja intenso y catalogada como susceptible a B. cinerea y la segunda una flor con un color rojo brillante y catalogada como medianamente susceptible a B. cinerea (Friedman et al., 2010; Mosqueda-Lazcares et al., 2011) de las aplicaciones semanales de Tricotec® WG (1 g/L, equivalente a 1×106 conidios/mL) durante la fase de desarrollo floral, desde la presencia del botón hasta el corte (cuatro semanas), mostraron una eficacia biológica en el control de B. cinerea estadísticamente similar a la del esquema de manejo químico convencional empleado por la finca.
Al determinar la incidencia del moho gris en cámara húmeda para la variedad Orange Crush, el tratamiento con Tricotec® WG registró un 53 %, una cifra muy cercana al 50 % obtenido con el esquema de manejo convencional de la finca. En ambos tratamientos, el índice de severidad fue de 0.6, calculado a partir de una escala de cinco grados (grado 0: flor sana; grado 1: lesiones del área en un pétalo; grado 2: ; grado 3: uno o dos pétalos afectados entre 50 y 75 %; grado 4: afección de varios pétalos entre 75 y 100 %).
Para la variedad Freedom, los niveles de infección se mantuvieron bajos en ambos tratamientos: Tricotec® WG registró una incidencia del moho gris del 7 % y un índice de severidad de 0.2, mientras que el esquema de manejo de la finca alcanzó un 4 % de incidencia con un índice de 0.1. Cabe destacar que la mayoría de las lesiones observadas fueron de carácter puntual (diámetro ).
Durante la evaluación de vida en florero a los siete días, la aplicación de Tricotec® WG redujo de la manifestación de moho gris en ambas variedades. En la variedad Orange Crush, la incidencia del moho gris fue del 8 % con el bioplaguicida frente a un 36 % registrado con el esquema convencional de la finca, mientras que en la variedad Freedom alcanzó un 9 % en comparación con el 18 % del manejo tradicional. Respecto a la severidad, en Orange Crush el índice disminuyó de 0.7 en el tratamiento convencional a 0.3 con Tricotec® WG, en tanto que para la variedad Freedom el índice de severidad se mantuvo en un valor idéntico de 0.3 en los dos tratamientos.
En la epidemiología de B. cinerea, es fundamental considerar el suelo como un importante foco de inóculo primario, donde el patógeno sobrevive en residuos vegetales en forma de micelio, conidios o estructuras de resistencia como los esclerocios. Durante las labores culturales en el cultivo de rosa, especialmente el rastrillado de residuos en las camas de siembra, los conidios son dispersadas mecánicamente hacia la filosfera, iniciando nuevas infecciones. Al respecto, la aplicación en drench de Tricotec® WG en las camas de cultivo demostró reducir la carga infectiva en el suelo entre un 30 % y un 50 %, constituyéndose en una valiosa herramienta biológica para interrumpir el ciclo del patógeno desde su origen.
En este escenario, Tricotec® WG surge como una alternativa biológica eficaz para el manejo del moho gris en el cultivo de rosas y otras ornamentales. Se recomienda integrar este bioplaguicida en programas de manejo integrado en rotación con fungicidas de síntesis química, una estrategia que no solo optimiza el control sanitario en condiciones ambientales críticas, sino que resulta esencial para mitigar el riesgo de desarrollo de resistencia y favorecer la sostenibilidad del agroecosistema.
en condiciones ambientales críticas, sino que resulta esencial para mitigar el riesgo de desarrollo de resistencia y favorecer la sostenibilidad del agroecosistema.
Referencias
Bika, R., Baysal-Gurel, F., & Jennings, C. (2021). Botrytis cinerea management in ornamental production: a continuous battle. Canadian Journal of Plant Pathology, 43(3), 345–365. https://doi. org/10.1080/07060661.2020.1807409
Cotes, A.M., Zapata, Y., Beltrán, C., Kobayashi, S., Uribe, L., & Elad Y. (2018). Control Biológico De Patógenos Foliares. En A.M Cotes (Eds.), Control biológico de fitopatógenos, insectos y ácaros (Vol ppl. 1). Mosquera, Colombia: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria, Editorial AGROSAVIA.
http://hdl.handle.net/20.500.12324/33829
Elad, Y. (2016). Cultural and integrated control of Botrytis spp. En: Fillinger, S. & Elad, Y. (Eds.) Botrytis–the Fungus, the Pathogen and its Management in Agricultural Systems (pp 149-164). Springer International Publishing. https://doi. org/10.1007/978-3-319-23371-0
Friedman, H., Agami, O., Vinokur, Y., Droby, S., Cohen, L., Refaeli, G., Resnick, N., and Umiel, N. (2010). Characterization of yield, sensitivity to Botrytis cinerea and antioxidant content of several rose species suitable for edible flowers. Scientia Horticulturae, 123, 395-401. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2009.09.019
Fungicide Resistance Action Committee (FRAC). (2019). PATHOGEN RISK LIST.
https://www.frac.info/media/qluf3unn/frac-pathogen-list-2019.pdf
Giraldo, D., Saldarriaga, C., García, H., López, M., & González, A. (2024). Genotypic and phenotypic characterization of resistance to fenhexamid, carboxin, and prochloraz, in Botrytis cinerea isolates collected from cut roses in Colombia. Frontiers in microbiology, 15, 1378597. https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1378597
Lukasko, N. T., & Hausbeck, M. K. (2024). Resistance to Seven Site-Specific Fungicides in Botrytis cinerea from Greenhouse-Grown Ornamentals. Plant disease, 108(2), 278–285. https://doi. org/10.1094/PDIS-06-23-1213-SR
Moreno-Velandia, C.A., Izquierdo-García, L.F., Zapata-Narváez, Y.A., Beltrán-Acosta, C.R & Zuluaga-Mogollón, M.V. 2020. Tricotec® WG Biofungicida. Recomendaciones de uso y patógenos blancos. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria-AGROSAVIA. 48p. http://hdl.handle.net/20.500.12324/36526
Mosqueda-Lazcares, G., Arévalo-Galarza, M. D. L., Valdovinos-Ponce, G., Rodríguez-Pérez, J. E., and Colinas-León, M. T. (2011). Época de corte y manejo poscosecha de ocho cultivares de rosa de corte. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, (3), 591-602. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=263122300015
Muñoz, M., Faust, J. E., & Schnabel, G. (2019). Characterization of Botrytis cinerea From Commercial Cut Flower Roses. Plant disease, 103(7), 1577–1583. https://doi.org/10.1094/PDIS-09-18- 1623-RE
Ullah, I., Yuan, W., Khalil, H.B. et al. Understanding Botrytis cinerea infection and gray mold management: a review paper on deciphering the rose›s thorn. Phytopathol Res 6, 42 (2024). https://doi.org/10.1186/s42483-024-00262-9
Zerdoner, M., Gabriëls, S., Arens, P., Visser, R. G. F., & Mishra, P. (2025). Detection of Botrytis cinerea severity in rose petals using hyperspectral imaging for plant breeding applications. Computers and Electronics in Agriculture, 233, Article 110210. https://doi.org/10.1016/j.compag.2025.110210
Elaborado por: Yimmy Alexander Zapata Narváez – Investigador AGROSAVIA
